Mitochondrial endocrinology Mitochondria as key to hormones and metabolism


Download 2.44 Mb.
Pdf ko'rish
bet19/23
Sana01.10.2017
Hajmi2.44 Mb.
#16915
1   ...   15   16   17   18   19   20   21   22   23

steroidogenic acute regulatory protein (StAR) gene in Japanese patients with

congential lipoid adrenal hyperplasia. Hum. Mol. Genet. 6, 571–576

.

Nebert, D.W., Wikvall, K., Miller, W.L., 2013. Human cytochromes P450 in health



and disease. Phil. Trans. R. Soc. B 368, 20120431, <

http://dx.doi.org/10.1098/

rstb.2012.0431

>.

Norman, A.W., 1998. Sunlight, season, skin pigmentation, vitamin D, and 25-



hydroxyvitamin D: integral components of the vitamin D endocrine system.

Am. J. Clin. Nutr. 67, 1108–1110

.

Ohyama, Y., Noshiro, M., Okuda, K., 1991. Cloning and expression of cDNA encoding



25-hydroxyvitamin D

3

24-hydroxylase. FEBS Lett. 278, 195–198



.

Olvera-Sanchez, S., Espinosa-Garcia, M.T., Monreal, J., Flores-Herrera, O., Martinez,

F., 2011. Mitochondrial heat shock protein participates in placental

steroidogenesis. Placenta 32, 222–229

.

Papadopoulos, V., Miller, W.L., 2012. Role of mitochondria in steroidogenesis. Best



practice & research. Clin. Endocrinol. Metab. 26, 771–790

.

Papadopoulos, V., Amri, H., Li, H., Boujrad, N., Vidic, B., Garnier, M., 1997. Targeted



disruption of the peripheral-type benzodiazepine receptor gene inhibits

steroidogenesis in the R2C Leydig tumor cell line. J. Biol. Chem. 272, 32129–

32135

.

Papadopoulos, V., Baraldi, M., Guilarte, T.R., Knudsen, T.B., Lacapere, J.J., Lindemann,



P., Norenberg, M.D., Nutt, D., Weizman, A., Zhang, M.R., Gavish, M., 2006.

Receptor based on its structure and molecular function. Trends Pharmacol. Sci.

27, 402–409

.

Pawlak, K.J., Prasad, M., Thomas, J.L., Whittal, R.M., Bose, H.S., 2011. Inner



mitochondrial

translocase

Tim50

interacts



with

3b-hydroxysteroid

dehydrogenase type 2 to regulate adrenal and gonadal steroidogenesis. J. Biol.

Chem. 286, 39130–39140

.

Pelletier, G., Li, S., Luu-The, V., Tremblay, Y., Belanger, A., Labrie, F., 2001.



Immunoelectron microscopic localization of three key steroidogenic enzymes

(cytochrome P450(scc), 3b-hydroxysteroid dehydrogenase and cytochrome

P450(c17)) in rat adrenal cortex and gonads. J. Endocrinol. 171, 373–383

.

Penning, T.M., 1997. Molecular endocrinology of hydroxysteroid dehydrogenases.



Endocr. Rev. 18, 281–305

.

Pon, L.A., Orme-Johnson, N.R., 1986. Acute stimulation of steroidogenesis in



corpus luteum and adrenal cortex by peptide hormones. J. Biol. Chem. 261,

6594–6599

.

Pon, L.A., Hartigan, J.A., Orme-Johnson, N.R., 1986. Acute ACTH regulation of adrenal



corticosteroid biosynthesis: rapid accumulation of a phosphoprotein. J. Biol.

Chem. 261, 13309–13316

.

Porter, F.D., Herman, G.E., 2011. Malformation syndromes caused by disorders of



cholesterol synthesis. J. Lipid Res. 52, 6–34

.

Prasad, M., Thomas, J.L., Whittal, R.M., Bose, H.S., 2012. Mitochondrial 3-



hydroxysteroid dehydrogenase enzyme activity requires reversible pH-

dependent conformational changes at the intermembrane space. J. Biol. Chem.

287, 9534–9546

.

Riegelhaupt, J.J., Waase, M.P., Garbarino, J., Cruz, D.E., Breslow, J.L., 2010. Targeted



disruption of steroidogenic acute regulatory protein D4 leads to modest weight

reduction and minor alterations in lipid metabolism. J. Lipid Res. 51, 1134–

1143

.

Rodriguez-Agudo, D., Ren, S., Wong, E., Marques, D., Redford, K., Gil, G., Hylemon,



P.B., Pandak, W.M., 2008. Intracellular cholesterol transporter StarD4 binds free

cholesterol and increases cholesteryl ester formation. J. Lipid Res. 49, 1409–

1419

.

Romanowski, M.J., Soccio, R.E., Breslow, J.L., Burley, S.K., 2002. Crystal structure of



the Mus musculus cholesterol-regulated START protein 4 (StarD4) containing a

StAR-related lipid transfer domain. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 99, 6949–6954

.

Rone, M.B., Liu, J., Blonder, J., Ye, X., Veenstra, T.D., Young, J.C., Papadopoulos, V.,



2009. Targeting and insertion of the cholesterol-binding translocator protein

into the outer mitochondrial membrane. Biochemistry 48, 6909–6920

.

Rone, M.B., Midzak, A.S., Issop, L., Rammouz, G., Jagannathan, S., Fan, J., Ye, X.,



Blonder, J., Veenstra, T., Papadopoulos, V., 2012. Identification of a dynamic

mitochondrial protein complex driving cholesterol import, trafficking, and

metabolism to steroid hormones. Mol. Endocrinol. 26, 1868–1882

.

Rubtsov, P., Karmanov, M., Sverdlova, P., Spirin, P., Tiulpakov, A., 2009. A novel



homozygous mutation in CYP11A1 gene is associated with late onset adrenal

insufficiency and hypospadias in a 46 XY patient. J. Clin. Endocrinol. Metab. 94,

936–939

.

Saenger, P., Klonari, Z., Black, S.M., Compagnone, N., Mellon, S.H., Fleischer, A.,



Abrams, C.A.L., Shackleton, C.H.L., Miller, W.L., 1995. Prenatal diagnosis of

congenital lipoid adrenal hyperplasia. J. Clin. Endocrinol. Metab. 80, 200–205

.

Sahakitrungruang, T., Tee, M.K., Blackett, P.R., Miller, W.L., 2011. Partial defect in the



cholesterol side-chain cleavage enzyme P450scc (CYP11A1) resembling

nonclassic congenital lipoid adrenal hyperplasia. J. Clin. Endocrinol. Metab.

96, 792–798

.

Schimmer, B.P., White, P.C., 2010. Steroidogenic factor 1: its roles in differentiation,



development and disease. Mol. Endocrinol. 24, 1322–1337

.

Schlingmann, K.P., Kaufmann, M., Weber, S., Irwin, A., Goos, C., John, U., Misselwitz,



J., Klaus, G., Kuwertz-Broking, E., Fehrenbach, H., Wingen, A.M., Guran, T.,

Hoenderop, J.G., Bindels, R.J., Prosser, D.E., Jones, G., Konrad, M., 2011. Mutations

in CYP24A1 and idiopathic infantile hypercalcemia. N. Engl. J. Med. 365, 410–

421


.

Sheftel, A.D., Stehling, O., Pierik, A.J., Elsasser, H.P., Muhlenhoff, U., Webert, H.,

Hobler, A., Hannemann, F., Bernhardt, R., Lill, R., 2010. Humans possess two

mitochondrial ferredoxins, Fdx1 and Fdx2, with distinct roles in

steroidogenesis, heme, and Fe/S cluster biosynthesis. Proc. Natl. Acad. Sci.

USA 107, 11775–11780

.

Shen, W.J., Patel, S., Natu, V., Hong, R., Wang, J., Azhar, S., Kraemer, F.B., 2003.



Interaction of hormone-sensitive lipase with steroidogenic acute regulatory

protein. J. Biol. Chem. 278, 43870–43876

.

Solish, S.B., Picado-Leonard, J., Morel, Y., Kuhn, R.W., Mohandas, T.K., Hanukoglu, I.,



Miller, W.L., 1988. Human adrenodoxin reductase: two mRNAs encoded by a

single gene of chromosome 17cen?25 are expressed in steroidogenic tissues.

Proc. Natl. Acad. Sci. USA 85, 7104–7108

.

Stevens, V.L., Xu, T., Lambeth, J.D., 1992. Cholesterol pools in rat adrenal



mitochondria: use of cholesterol oxidase to infer a complex pool structure.

Endocrinology 130, 1557–1563

.

Stocco, D.M., Clark, B.J., 1996. Regulation of the acute production of steroids in



steroidogenic cells. Endocr. Rev. 17, 221–244

.

Stocco, D.M., Sodeman, T.C., 1991. The 30 kDa mitochondrial proteins induced by



hormone stimulation in MA-10 mouse Leydig tumor cells are processed from

larger precursors. J. Biol. Chem. 266, 19731–19738

.

Strushkevich, N., MacKenzie, F., Cherkesova, T., Grabovec, I., Usanov, S., Park, H.W.,



2011. Structural basis for pregnenolone biosynthesis by the mitochondrial

monooxygenase system. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 108, 10139–10143

.

Sugawara, T., Holt, J.A., Driscoll, D., Strauss III, J.F., Lin, D., Miller, W.L., Patterson, D.,



Clancy, K.P., Hart, I.M., Clark, B.J., Stocco, D.M., 1995. Human steroidogenic acute

regulatory protein (StAR): functional activity in COS-1 cells, tissue-specific

expression, and mapping of the structural gene to 8p11.2 and an expressed

pseudogene to chromosome 13. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 92, 4778–4782

.

Tajima, T., Fujieda, K., Kouda, N., Nakae, J., Miller, W.L., 2001. Heterozygous



mutation in the cholesterol side chain cleavage enzyme (P450scc) gene in a

patient with 46, XY sex reversal and adrenal insufficiency. J. Clin. Endocrinol.

Metab. 86, 3820–3825

.

Tee, M.K., Abramsohn, M., Loewenthal, N., Harris, M., Siwach, S., Kaplinsky, A.,



Markus, B., Birk, O., Sheffield, V.C., Pavari, R., Hershkovitz, E., Miller, W.L., 2013.

Varied clinical presentations with mutations in CYP11A1 encoding the

cholesterol side chain cleavage enzyme, P450scc. J. Clin. Endocrinol. Metab.

98, 713–720

.

Thomas, J.L., Myers, R.P., Strickler, R.C., 1989. Human placental 3-hydroxy-5-ene-



steroid dehydrogenase and steroid 5 D 4-ene-isomerase: purification from

mitochondria and kinetic profiles, biophysical characterization of the purified

mitochondrial and microsomal enzymes. J. Steroid Biochem. 33, 209–217

.

Thorsell, A.G., Lee, W.H., Persson, C., Siponen, M.I., Nilsson, M., Busam, R.D.,



Kotenyova, T., Schuler, H., Lethio, L., 2011. Comparative structural analysis of

lipid binding START domains. PLoS ONE 6, e19521–e19532

.

Tsujishita, Y., Hurley, J.H., 2000. Structure and lipid transport mechanism of a StAR-



related domain. Nat. Struct. Biol. 7, 408–414

.

Tuckey, R.C., Headlam, M.J., Bose, H.S., Miller, W.L., 2002. Transfer of cholesterol



between phospholipid vesicles mediated by the steroidogenic acute regulatory

protein (StAR). J. Biol. Chem. 277, 47123–47128

.

Vanier, M.T., Millat, G., 2003. Niemann-Pick disease type C. Clin. Genet. 64, 269–



281

.

Wang, J.T., Lin, C.J., Burridge, S.M., Fu, G.K., Labuda, M., Portale, A.A., Miller, W.L.,



1998. Genetics of vitamin D 1

a

-hydroxylase deficiency in 17 families. Am. J.



Hum. Genet. 63, 1694–1702

.

White, P.C., Curnow, K.M., Pascoe, L., 1994. Disorders of steroid 11-hydroxylase



isozymes. Endocr. Rev. 15, 421–438

.

Xie, Z.J., Munson, S.J., Huang, N., Portale, A.A., Miller, W.L., Bikle, D.D., 2002. The



mechanism of 1,25-dihydroxyvitamin D3 auto-regulation in keratinocytes. J.

Biol. Chem. 277, 36987–36990

.

Xu, S., Benoff, B., Liou, H.L., Lobel, P., Stock, A.M., 2007. Structural basis of sterol



binding by NPC2, a lysosomal protein deficient in Niemann-Pick type C2

disease. J. Biol. Chem. 282, 23525–23531

.

Yang, X., Iwamoto, K., Wang, M., Artwohl, J., Mason, J.I., Pang, S., 1993. Inherited



congenital adrenal hyperplasia in the rabbit is caused by a deletion in the gene

72

W.L. Miller / Molecular and Cellular Endocrinology 379 (2013) 62–73



encoding cytochrome P450 cholesterol side-chain cleavage enzyme.

Endocrinology 132, 1977–1982

.

Yaworsky, D.C., Baker, B.Y., Bose, H.S., Best, K.B., Jensen, L.B., Bell, J.D., Baldwin, M.A.,



Miller, W.L., 2005. PH-dependent interactions of the carboxyl-terminal helix of

steroidogenic acute regulatory protein with synthetic membranes. J. Biol. Chem.

280, 2045–2054

.

Zhang, M., Liu, P., Dwyer, N.K., Christenson, L.K., Fujimoto, T., Martinez, F., Comly,



M., Hanover, J.A., Blanchette-Mackie, E.J., Strauss 3rd, J.F., 2002. MLN64

mediates


mobilization

of

lysosomal



cholesterol

to

steroidogenic



mitochondria. J. Biol. Chem. 277, 33300–33310

.

Ziegler, G.A., Vonrhein, C., Hanukoglu, I., Schulz, G.E., 1999. The structure of



adrenodoxin reductase of mitochondrial P450 systems: electron transfer for

steroid biosynthesis. J. Mol. Biol. 289, 981–990

.

W.L. Miller / Molecular and Cellular Endocrinology 379 (2013) 62–73



73

Review

Mitochondria and mammalian reproduction

João Ramalho-Santos

a

,



b

,



, Sandra Amaral

a

a



CNC – Center for Neuroscience and Cell Biology, University of Coimbra, Portugal

b

Department of Life Sciences, University of Coimbra, Portugal



a r t i c l e i n f o

Article history:

Available online 13 June 2013

Keywords:

Reproduction

Mitochondria

Gametogenesis

Fertilization

Steroidogenesis

a b s t r a c t

Mitochondria are cellular organelles with crucial roles in ATP synthesis, metabolic integration, reactive

oxygen species (ROS) synthesis and management, the regulation of apoptosis (namely via the intrinsic

pathway), among many others. Additionally, mitochondria in different organs or cell types may have dis-

tinct properties that can decisively influence functional analysis. In terms of the importance of mitochon-

dria in mammalian reproduction, and although there are species-specific differences, these aspects

involve both energetic considerations for gametogenesis and fertilization, control of apoptosis to ensure

the proper production of viable gametes, and ROS signaling, as well as other emerging aspects. Crucially,

mitochondria are the starting point for steroid hormone biosynthesis, given that the conversion of

cholesterol to pregnenolone (a common precursor for all steroid hormones) takes place via the activity

of the cytochrome P450 side-chain cleavage enzyme (P450scc) on the inner mitochondrial membrane.

Furthermore, mitochondrial activity in reproduction has to be considered in accordance with the very

distinct strategies for gamete production in the male and female. These include distinct gonad

morpho-physiologies, different types of steroids that are more prevalent (testosterone, estrogens,

progesterone), and, importantly, the very particular timings of gametogenesis. While spermatogenesis

is complete and continuous since puberty, producing a seemingly inexhaustible pool of gametes in a fixed

environment; oogenesis involves the episodic production of very few gametes in an environment that

changes cyclically. These aspects have always to be taken into account when considering the roles of

any common element in mammalian reproduction.

Ó 2013 Elsevier Ireland Ltd. All rights reserved.

Contents


1.

Introduction . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 75

2.

Mitochondria in gametogenesis and early embryo development . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 76



2.1.

Primordial germ cells and gonad specification . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 76

2.2.

Mitochondria in spermatogenesis . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 76



2.3.

Mitochondria in sperm . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 79

2.4.

Mitochondria in oogenesis . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 79



2.5.

Mitochondria in early embryo development . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 79

3.

The endocrine role of mitochondria in reproduction . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 80



3.1.

The mitochondrial step in steroid biosynthesis. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 80

3.2.

Sex-specific steroidogenesis . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 80



4.

Conclusions and future perspectives. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 80

Acknowledgements . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 81

References . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 81

0303-7207/$ - see front matter

Ó 2013 Elsevier Ireland Ltd. All rights reserved.

http://dx.doi.org/10.1016/j.mce.2013.06.005

Corresponding author. Address: Department of Life Sciences, University of Coimbra, PO Box 3046, 3001-401 Coimbra, Portugal. Tel.: +351 (239) 855 760; fax: +351 (239)



855 789.

E-mail address:

jramalho@ci.uc.pt

(J. Ramalho-Santos).

Molecular and Cellular Endocrinology 379 (2013) 74–84

Contents lists available at

SciVerse ScienceDirect

Molecular and Cellular Endocrinology

j o u r n a l h o m e p a g e : w w w . e l s e v i e r . c o m / l o c a t e / m c e


1. Introduction

Mitochondria are usually mentioned primarily in terms of cellu-

lar ATP production by oxidative phosphorylation (OXPHOS) via the

electron transport chain (ETC) located in the inner mitochondrial

membrane. ETC activity generates a transmembrane proton gradi-

ent (


Fig. 1

), of which the mitochondrial membrane potential

(MMP) is the main component, driving the ATP synthase (

Kakkar


and Singh, 2007; Newmeyer and Ferguson-Miller, 2003; Scheffler,

2001


). A few components of this machinery are encoded by resident

mitochondrial DNA (mtDNA) a prokaryotic-like genome that is

inherited maternally (

Jansen and de Boer, 1998; St John et al., 2010

).

However, recent mitochondrial research focuses on other top-



ics, such as the production of reactive oxygen species (ROS) by

the ETC and their role(s) in both physiological cell signaling and

pathological processes (related to oxidative stress); the regulation

of the intrinsic apoptosis pathway and intracellular calcium levels;

the production of steroid hormones; quality control of cellular

mitochondria via autophagy/mitophagy pathways, or the central

position of mitochondria in integrating several metabolic and sig-

naling pathways, epigenetics and the cell cycle (

Folmes et al.,

2012; Kakkar and Singh, 2007; Nichols and Ferguson, 2002; Nun-

nari and Suomalainen, 2012

).

Moreover, although previously mitochondria were thought to



have a fixed and individual morphology, it is now known that

changes in shape (both in terms of cristae structure and matrix

texture), size (regulated by the fission/fusion machinery) and

relationships with other cellular features (the cytoskeleton,

the endoplasmic reticulum) can have important functional

consequences (

Bereiter-Hahn and Voth, 1994; Collins et al., 2002;

Rowland and Voeltz, 2012

). Indeed, studies of mitochondrial

(dys)function related to aging, degenerative and metabolic disor-

ders or cancer encompass several of these aspects, from abnormal

OXPHOS activity and ROS production, to defective apoptosis and

mitophagy/autophagy, to changes in mtDNA and mitochondrial

structure (

Amaral et al., 2008b; Amaral and Ramalho-Santos,

2009; Cereghetti and Scorrano, 2011; Correia et al., 2012; Dorn

and Scorrano, 2010; Martinou and Youle, 2011; Nunnari and

Suomalainen, 2012; Oettinghaus et al., 2012; Palmeira and Rama-

lho-Santos, 2011; Ramalho-Santos and Rodrigues, 2013; Ramalho-

Santos et al., 2009; St John et al., 2010

). In short, mitochondria are

involved in many other duties while (also) making ATP.

In this review we will focus specifically on the role of mitochon-

dria in gametogenesis, fertilization and early embryo development.

It should noted that mitochondrial function is most often studied

in terms of dysfunction induced by pathological conditions or toxic

substances (pharmacological agents, environmental contaminants,

distinct pathologies, etc.), and how these dysfunctions may ulti-

mately affect the reproductive system (

Aly and Khafagy, 2011;

Amaral et al., 2008a, 2009; Banu et al., 2011; Miyamoto et al.,

2010; Mota et al., 2011; Svechnikov et al., 2009; Wang et al.,

2009, 2010

). Using different aspects of mitochondrial function as

damage indicators in several disease models and, conversely, as

diagnostic tools in Assisted Reproductive Technologies (ART), has

increased in recent years, in terms of functional sperm analysis

(

Aitken et al., 2012; Dorn and Scorrano, 2010; Gallon et al., 2006;



Marchetti et al., 2002; Marchetti et al., 2012; Nakada et al., 2006;

Ruiz-Pesini et al., 1998; Sanchez-Partida et al., 2008; Sousa et al.,

2011

), and oocyte quality assessment (



Van Blerkom, 2011; Wang

and Sun, 2007

).

Fig. 1. Possible roles of mitochondria in reproduction. Mitochondria are double membrane organelles with their own genome (mtDNA). Mitochondrial substrates derived



from glycolysis, beta-oxidation of fatty acids and the Krebs cycle (Tricarboxylic acid cycle- TCA) provide energy for ATP production through oxidative phosphorylation

(OXPHOS) by the activity of the electron transfer chain (ETC) on the inner mitochondrial membrane, composed of four inner membrane (IMM)-associated enzyme complexes

(I–IV), plus cytochrome c (Cytc) and the mobile electron carrier ubiquinone (Q). This electron transfer generates a proton gradient across the inner membrane that drives ATP

synthase (often known as complex V). However, at several sites of the electron transport chain (mainly complexes I and III) electrons can react with oxygen forming ROS. The

energy dissipation mechanism promoted by UCPs (uncoupling proteins) can reduce ROS formation. Both beta-oxidation of fatty acids and amino acid catabolism provide TCA


Download 2.44 Mb.

Do'stlaringiz bilan baham:
1   ...   15   16   17   18   19   20   21   22   23




Ma'lumotlar bazasi mualliflik huquqi bilan himoyalangan ©fayllar.org 2024
ma'muriyatiga murojaat qiling