Food Biotechnology 4 Т. №1 2022 issn 2686-7982

Разделение веществ проводили на хромато-
графе Shimadzu LC-20 Prominence со спектрофо-
тометрическим детектором Shimadzu SPD20A и 
рефрактометрическим детектором RID-10A, с 
колонкой Shodex SUGAR SH1821 8.0 ID × 300 mmL; 
элюент – 0,1H H
2
SO
4
; температура колонки –
50,0 ± 0,1 
о
C. Скорость потока – 0,6 см
3
/мин; объем 
инжекции – 5 мкл. Скрининг и идентификацию 
целевых сахаров осуществляли согласно ГОСТ 
32167-2013; качественную оценку – путем срав-
нения значений времени удерживания иденти-
фицируемых сахаров в ВЭЖХ-спектрах стандарт-
ного раствора и раствора испытуемого образца, 
количественное определение – методом внеш-
них стандартов по площадям или высотам пиков 
определяемых сахаров в ВЭЖХ-спектре раствора 
испытуемого образца по отношению к таковым 
стандартного раствора.
В качестве модели для оценки влияния экс-
трактов микрозелени ячменя с разными вари-
антами подготовки к посеву на скорость размно-
жения микроорганизмов были использованы 
представители рода Bifidobacterium. Выбор обу-
словлен тем, что бифидобактерии обладают ши-
роким набором сахаролитических ферментов, 
позволяющих им доминировать в многокомпо-

---

Пищевая биотехнология 
Food Biotechnology
57
Т. 
7 № 1 2022
ISSN 2686-7982 (Online) ISSN 2500-1922 (Print) 
обработанного СВЧ-излучением плюс одна коло-
ния B. bifidum 20;
• кювета 8 – опытная 8-я: жидкая бифидум-сре-
да (1 см
3
) плюс экстракт проростков ячменя, 
обработанного СВЧ-излучением мощностью 
0,42 кВт, частота магнетрона – 2,45 ГГц, экспози-
ция – 11 с плюс одна колония B. bifidum 20;
• кювета 9 – опытная 9-я: жидкая бифидум-сре-
да (1 см
3
) плюс экстракт проростков ячменя, 
обработанного СВЧ-излучением мощностью 
0,70 кВт, частота магнетрона – 2,45 ГГц, экспози-
ция – 11 с плюс одна колония B. bifidum 20.
Кинетику роста микроорганизмов определяли 
на спектрофотометре СФ-2000 (ОКБ «Спектр», 
Россия), фиксируя показатели оптической плот-
ности содержимого кювет (в ед. оп. пл.) ежечас-
но в течение 20 ч. 
Результаты исследования и их обсуждение
Бифидобактерии как представители нормо-
биоты кишечного биотопа обладают широким 
набором сахаролитических ферментов и высо-
кой скоростью метаболизма. Широкую субстрат-
ную специфичность бифидобиоты рассматрива-
ют как один из механизмов их доминирования 
в кишечном микробиоценозе. Исследование со-
держания углеводного состава экстрактов про-
ростков ячменя позволило идентифицировать 
шесть сахаров, являющихся моно- и олигосаха-
ридами. При этом СВЧ-подготовка изменяет ко-
личественное содержание фосфорилированных 
форм углеводов (см. таблицу). Кроме сахаров об-
наружен многоатомный спирт триетол. 
Моносахара в экстрактах неэкспонированных 
проростков ячменя были представлены пенто-
зами и гексозами, а олигосахара – дисахаридами. 
Помимо этого отмечено наличие метаболически 
активных форм углеводов – рибозо-5-фосфата и 
глюкозо-1-фосфата. Содержание глюкозо-1-фос-
фата – наибольшее среди всех углеводов; на 
втором месте – нефосфолирированные формы 
гексоз – манноза и глюкоза. Меньше всего об-
наружено дисахарида трегалозы. Кроме угле-
водов в экстракте выявлено незначительное 
содержание многоатомного спирта триетола. 
После СВЧ-обработки семян в режиме 0,42 кВт в 
течение 11 мин в экстракте несколько увеличи-
лось содержание рибозо-5-фосфата, и в 3,4 раза 
возросло количество триетола. Экспонирование 
семян до посева СВЧ мощностью 0,7 кВт приво-
дило к тому, что содержание таких углеводов, 
как рибозо-5-фосфат, глюкоза, манноза, глюко-
зо-1-фосфат в экстрактах микрозелени снижа-
лось еще заметнее, чем в неэкспонированных и 
обработанных в щадящем режиме семенах. Тре-
галозу не регистрировали, однако в составе по-
являлись сахароза и галактоза, которые, по ли-
тературным данным, способны стимулировать 
рост бифидобактерий. При этом также отмеча-
лось наличие триетола. 
Кривые роста штаммов в контрольных кюве-
тах свидетельствуют о том, что лаг-фаза у штам-
ма B. bifidum 20 длилась три часа (кювета 3);
у пробиотического (кювета 2) она была короче – 
30 мин (см. рисунок). 
Фаза экспоненциального роста B. bifidum 791 
начиналась практически сразу после внесения 
микроорганизма в питательную среду. Средний 
темп прироста составил 0,3 ед. оп. пл. за один 
час, и уже через шесть часов культуральная жид-
кость с B. bifidum 791 достигала максимальной 
оптической плотности – 1,91 ед. Далее начина-
лась стационарная фаза, когда количество бак-
териальных клеток практически не изменялось. 
У исследуемого изолята кривая роста была бо-
лее «пологой», и максимальные значения опти-