1. Эпизоотология как наука, ее достижения и задачи на современном этапе Эпизоотология

Патологоанатомические изменения неспецифичны. Трупы павших животных истощены, имеются следы укусов, волосы смочены слюной. Желудок пуст, признаки катарального воспаления слизистой оболочки желудка и тонких кишок, иногда кровоизлияния. Головной мозг и его оболочки отечные, часто – с мелкими кровоизлияниями.
Диагноз. Учитывают особенности эпизоотической ситуации в данной местности и соседних районах, данные анамнеза. Из клинических признаков – агрессивность животных, развитие парезов и параличей. Для лабораторной диагностики направляют труп мелкого животного, голову или головной мозг – от крупных, с соблюдением соответствующих правил взятия и упаковки патматериала.
Методы культивирования вируса в лаборатории. Помимо интрацеребральных пассажей на кроликах и белых мышах вирус бешенства успешно репродуцируется в культуре фибробластов куриных эмбрионов. Показана также возможность культивирования вируса бешенства в культурах клеток (слюной железы и почки собаки, почек поросенка, кролика, эмбрионов овцы, человека и японских перепелок).
Методы индикации и идентификации. Порядок проведения исследований: из каждого отдела головного мозга левой и правой сторон (аммонова рога, мозжечка, коры полушарий и продолговатого мозга) готовят по 4 мазка-отпечатка для РИФ и обнаружения телец Бабеша-Негри, с мозговой тканью ставят РДП, при отрицательных результатах ставят биопробу.
Мазки-отпечатки после окрашивания просматривают в световом микроскопе с иммерсионной системой. Однако тельца Бабеша-Негри выявляют лишь в 65-85% случаев бешенства, поэтому отсутствие их не является отрицательным ответом, и материал исследуется в других тестах (РИФ, РДП, биопроба).
РИФ – один из основных тестов при диагностике бешенства. При высококвалифицированном выполнении получают в 99-100% совпадения с методом биопробы. Обычно в диагностической практике используют прямой метод РИФ, который проводят с применением антирабического флюоресцирующего иммуноглобулина. Метод РИФ дает возможность обнаружить вирус бешенства в клетках роговицы глаз и предварительно поставить диагноз прижизненно: во время болезни животных, а также за 1-2 дня и более до клинического проявления.
РДП применяют для обнаружения АГ вируса в не консервированном головном мозге животных, павших от уличного бешенства, или мышат, используемых в биопробе. Процент выявления вирусного АГ составляет 45-70. При положительной пробе на зараженных мышах РДП выявляет до 100% случаев.
Биопроба является более эффективным методом. Из всех видов животных (кролики, морские свинки, взрослые белые мыши и хомячки), используемых для биопробы, предпочтение отдается мышам-сосунам, как более чувствительным и менее опасным в работе. Другие реакции (РСК, ИФА, РН) используются редко.
Иммунитет. В настоящее время для специфической профилактики бешенства применяют инактивированные и живые вакцины. В медицине используются только инактивированные. Первая антирабическая вакцина изготовлена в 1885 году Пастером. С 1956 года живые или инактивированные вакцины готовят из штаммов вируса бешенства, адаптированных к культуре клеток. В нашей стране применяют следующие вакцины:
-сухую инактивированную этанол-вакцину (ВГНКИ);
-сухую культуральную инактивированную вакцину из штамма «Щелково-51»;
-культуральную лиофилизированную и культуральную сорбированную вакцину из штамма ТС-80 (ВНИИВВиМ);
-вирусвакцину для оральной иммунизации плотоядных животных против бешенства (Синраб) (ВНИИЗЖ). Пероральную иммунизацию диких хищников против бешенства проводят 2 раза в год (февраль-апрель и октябрь-декабрь).